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    小鼠肝細(xì)胞培養(yǎng)實(shí)驗(yàn)

    發(fā)布時(shí)間: 2023-01-05  點(diǎn)擊次數(shù): 746次

    原理

    直接從生物體內(nèi)獲取組織細(xì)胞進(jìn)行的首-次培養(yǎng)稱為原代細(xì)胞培養(yǎng)。原代培養(yǎng)是建立各種細(xì)胞系的第一步,是從事培養(yǎng)工作的人員應(yīng)熟悉和掌握的最基本的技術(shù)。根據(jù)培養(yǎng)方法不同分為組織塊培養(yǎng)法和單層細(xì)胞培養(yǎng)法。

    材料與儀器

    小鼠
    DMEM DMEM 胰酶 PBS
    飯盒 紗布 小剪子 小鑷子 大鑷子 大燒杯 平皿 研磨玻片 濾網(wǎng) 離心管 6 孔培養(yǎng)板 吸管 移液管 手套 微量加樣器

    步驟

    一、實(shí)驗(yàn)步驟

    1. 將小鼠斷頸致死,置 75%酒精泡2-3 秒鐘,取肝臟,置于盛有 PBS 的平皿中。
     
    2. 剔除脂肪、結(jié)締組織、血液等雜物,轉(zhuǎn)移到另一個(gè)盛有 PBS 液的平皿中。
     
    3. 用手術(shù)剪將臟器剪成小塊(大小約 1mm2),玻片研磨,轉(zhuǎn)到離心管,離心(1000 rpm,5 min)。
     
    4. 視組織或細(xì)胞量加額加入5-6 倍(3-5  ml)胰酶,37℃中消化 20 分鐘,每隔 5 分鐘振蕩一次,或用吸 管吹打一次,使細(xì)胞分離。
     
    5. 加入3-5 ml 含血清的培養(yǎng)液以中止胰酶消化作用。
     
    6. 用100 目孔徑濾網(wǎng)濾過(guò),除去未消化的大組織塊。
     
    7. 再次離心5 min,棄上清液。
     
    8. 加入無(wú)血清培養(yǎng)液5 ml,沖散細(xì)胞,再離心一次,棄上清液。
     
    9. 加入含血清的培養(yǎng)液 1-2 ml (視細(xì)胞量),血球計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù)。
     
    10. 將細(xì)胞調(diào)整到5x105/ml 左右,轉(zhuǎn)移至6 孔培養(yǎng)板中,37℃下培養(yǎng)。
     

    注意事項(xiàng)

    1. 自取材開始,保持所有組織細(xì)胞處于無(wú)菌條件。細(xì)胞計(jì)數(shù)可在有菌環(huán)境中進(jìn)行。

     

    2. 在超凈臺(tái)中,組織細(xì)胞、培養(yǎng)液等不能暴露過(guò)久,以免溶液蒸發(fā)。

     

    3. 凡在超凈臺(tái)外操作的步驟,各器皿需用蓋子或橡皮塞蓋住,以防止細(xì)菌落入。

     

    4. 操作前要洗手,進(jìn)入超凈工作臺(tái)后要用75%酒精或0.2%新潔爾滅擦拭手。試劑瓶口也要擦拭。

     

    5. 點(diǎn)燃酒精燈,操作在火焰附近進(jìn)行,耐熱物品要經(jīng)常在火焰上燒灼。金屬器械燒灼時(shí)間不能太長(zhǎng),以免退火,且冷卻后才能夾取組織。吸取過(guò)營(yíng)養(yǎng)液的用具不能再燒灼,以免燒焦形成碳膜。

     

    6. 操作動(dòng)作要準(zhǔn)確敏捷,但又不能太快,以防空氣流動(dòng),增加污染機(jī)會(huì)。

     

    7. 不能用手觸及消毒器皿的工作部分,工作臺(tái)面上的用品擺放要布局合理。

     

    8. 瓶子開口后要盡量保持45°斜位。

     

    9. 吸溶液的吸管等不能混用。


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